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我司解析細胞MTT的用途及原理

來源:研域生物技術(shù)(上海)有限公司   2020年03月23日 12:52  

MTT主要有兩個用途:

1. 藥物(也包括其他處理方式如放射線照射)對體外培養(yǎng)的細胞毒性的測定;

2. 細胞增殖及細胞活性測定。

檢測原理為活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性MTT還原為水不溶性的藍紫色結(jié)晶甲臜(Formazan)并沉積在細胞中,而死細胞無此功能。二甲基亞砜(DMSO)能溶解細胞中的甲臜,用酶標儀在490nm波長處測定其光吸收值,在一定細胞數(shù)范圍內(nèi),MTT結(jié)晶形成的量與細胞數(shù)成正比。

根據(jù)測得的吸光度值(OD值),來判斷活細胞數(shù)量,OD 值越大,細胞活性越強(如果是測藥物毒性,則表示藥物毒性越?。?/p>

貼壁細胞:

1、收集對數(shù)期細胞,調(diào)整細胞懸液濃度,每孔加入100ul,鋪板使待測細胞調(diào)密度至1000-10000孔,(邊緣孔用無菌PBS填充)。

2.、5%CO2,37℃孵育,至細胞單層鋪滿孔底(96孔平底板),加入濃度梯度的藥物,原則上,細胞貼壁后即可加藥,或兩小時,或半天時間,但我們常在前一天下午鋪板,次日上午加藥.一般5-7個梯度,每孔100ul,設(shè)3-5個復(fù)孔.建議設(shè)5個,否則難以反應(yīng)真實情況

3、5%CO2,37℃孵育16-48小時,倒置顯微鏡下觀察。

4、每孔加入20ulMTT溶液(5mg/ml,即0.5%MTT),繼續(xù)培養(yǎng)4h。若藥物與MTT能夠反應(yīng),可先離心后棄去培養(yǎng)液,小心用PBS沖2-3遍后,再加入含MTT的培養(yǎng)液。

5、終止培養(yǎng),小心吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液。

6、每孔加入150ul二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10min,使結(jié)晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD490nm處測量各孔的吸光值。

7、同時設(shè)置調(diào)零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜),對照孔(細胞、相同濃度的藥物溶解介質(zhì)、培養(yǎng)液、MTT、二甲基亞砜)。

懸浮細胞:

1、收集對數(shù)期細胞,調(diào)節(jié)細胞懸液濃度1×106/ml,按次序?qū)ⅲ?/p>

 補足的1640(無血清)培養(yǎng)基40ul;

 加Actinomycin D(有毒性)10ul用培養(yǎng)液稀釋 (儲存液100mg/ml,需預(yù)試尋找*稀釋度,1:10-1:20);

③ 需檢測物10ul;

④ 細胞懸液50ul(即5×104cell/孔),共 100ul加入到96孔板(邊緣孔用無菌水填充)。每板設(shè)對照(加100ml 1640)。

2、置37℃,5%CO2孵育16-48小時,倒置顯微鏡下觀察。

3、每孔加入10 ul MTT溶液(5 mg/ml,即0.5%MTT),繼續(xù)培養(yǎng)4 h。(懸浮細胞推薦使用WST-1,培養(yǎng)4 h后可跳過步驟4),直接酶聯(lián)免疫檢測儀OD570nm(630nm校準)測量各孔的吸光值)

4、離心(1000轉(zhuǎn)x10min),小心吸掉上清,每孔加入100 ul二甲基亞砜,置搖床上低速振蕩10 min,使結(jié)晶物充分溶解。在酶聯(lián)免疫檢測儀OD570nm(630nm校準)測量各孔的吸光值。

5、同時設(shè)置調(diào)零孔(培養(yǎng)基、MTT、二甲基亞砜),對照孔,每組設(shè)定3復(fù)孔。

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