產(chǎn)品名稱:HCT8/DDP人結腸癌順鉑耐藥株細胞 處理方法 含STR鑒定
細胞污染: HIV-1、 HBV、HCV、支原體、細菌、酵母和真菌檢測陰性。
細胞傳代步驟: 如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳代培養(yǎng)。1. 棄去培養(yǎng)上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。2. 加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培養(yǎng)瓶中,置于37℃培養(yǎng)箱中消化1-2分鐘,然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加少量培養(yǎng)基終止消化。3. 按6-8ml/瓶補加培養(yǎng)基,輕輕打勻后吸出,在1000RPM條件下離心4分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻。4. 將細胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中。
細胞復蘇步驟: 將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入4mL培養(yǎng)基混合均勻。在1000RPM條件下離心4分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細胞懸液加入培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過夜(或將細胞懸液加入10cm皿中,加入約8ml培養(yǎng)基,培養(yǎng)過夜)。第二天換液并檢查細胞密度。
細胞凍存步驟: 待細胞生長狀態(tài)良好時,可進行細胞凍存。下面T25瓶為例;1.細胞凍存時,棄去培養(yǎng)基后,PBS清洗瓶底1-2次后加入1ml胰酶,細胞變圓脫落后,加入2ml*培養(yǎng)基終止消化,可使用血球計數(shù)板計數(shù)。 2.1000RPM離心5分鐘去掉上清。用血清重懸浮,加DMSO至終濃度為10%。加入DMSO后迅速混勻,按每1ml的數(shù)量分配到凍存管中,注意凍存管做好標識。本公司按每個凍存管細胞數(shù)目大于1X106個細胞凍存。3.將凍存管置于程序降溫盒中,放入-80度冰箱,至少2個小時以后轉入液氮灌儲存。記錄凍存管位置以便下次拿取。
HCT8/DDP人結腸癌順鉑耐藥株細胞 的特點主要可以概括成三點:
① 持久性:細胞分化貫穿于生物體整個生命進程中,在胚胎期達到*程度
② 穩(wěn)定性和不可逆性:一般來說,分化了的細胞將一直保持分化后的狀態(tài),直到死亡
③ 普遍性:生物界普遍存在,是生物個體發(fā)育的基礎
HCT8/DDP人結腸癌順鉑耐藥株細胞 處理方法 含STR鑒定培養(yǎng)條件
RPMI164010%FBS
細胞生長:貼壁生長
細胞形態(tài):上皮樣
細胞數(shù)量:1×106個細胞數(shù)
細胞傳代:1:3傳代3~4天1次
剛收到細胞時,胎牛血清可以用15%培養(yǎng)兩三天,利于細胞盡快恢復狀態(tài),細胞穩(wěn)定后
再調回10%即可
收到細胞后如細胞狀態(tài)不佳,或培養(yǎng)中遇到問題,煩請當天盡快聯(lián)系,以便處理。當天及時反饋細胞情況和細胞照片是售后跟蹤處理重要參考依據(jù),請您務必重視。
1. 為什么培養(yǎng)的細胞要及時傳代?
答:體外培養(yǎng)的細胞大多具有生長接觸抑制的特性,也就是說當一個細胞被其他細胞包圍的時候,它就會停止生長,及時傳代后,細胞的生長得以繼續(xù)。
2.培養(yǎng)液pH下降很快可能原因有哪些?其解決辦法是什么?
答:通常細胞生長得非常快時,pH值通常下降得很快。此時可以及時傳代、提高傳代比例或降低血清量等方法進行解決。此外,培養(yǎng)瓶蓋擰得太緊、NaHCO3 緩沖系統(tǒng)緩沖能力不夠、培養(yǎng)液中鹽濃度不正確、細菌、酵母或真菌污染等也能導致pH值通常下降得很快。
(1)按培養(yǎng)液中NaHCO3 濃度增加或減少培養(yǎng)箱內(nèi)CO2 濃度,2.0g/L 到3.7g/L 濃度NaHCO3對應CO2濃度為5%到10%。
(2)改用不依賴CO2培養(yǎng)液。
(3)松開瓶蓋1/4 圈。加HEPES 緩沖液至10 到25mM終濃度。
(4)在CO2 培養(yǎng)環(huán)境中改用基于Earle′s 鹽配制的培養(yǎng)液,在大氣培養(yǎng)環(huán)境中培養(yǎng)改用Hanks 鹽配制的培養(yǎng)液。
(5)如果是污染造成的則丟棄培養(yǎng)物或用抗生素除菌。
3.培養(yǎng)液pH對細胞生長的影響?
答:由于大多數(shù)細胞適宜pH為7.2-7.4,偏離此范圍可能對細胞生長將產(chǎn)生有害的影響。但各種細胞對pH的要求也不*相同,原代培養(yǎng)細胞一般對pH變動耐受差,無限細胞系耐受力強。但總體來說,細胞耐酸性比耐堿性強一些。在配制培養(yǎng)用液時,需要注意一點:培新配的培養(yǎng)基在經(jīng)過0.10um或0.22um濾膜過濾時,溶液的pH還會向上浮動0.2左右。
4.購買之細胞冷凍管經(jīng)解凍后,為何會發(fā)生細胞數(shù)目太少之情形?
答:研究人員在冷凍細胞之培養(yǎng)時出現(xiàn)細胞數(shù)目太少,大都是因為離心過程操作上的失誤,造成細胞的物理性損傷,以及細胞流失。建議細胞解凍后不要立刻離心,應待細胞生長隔夜后再更換培養(yǎng)基即可。但對于DMSO敏感的細胞,還是復蘇細胞時,用離心去除DMSO比較好。
5.購買之細胞死亡或細胞存活率不佳可能原因?
答:研究人員在細胞培養(yǎng)時出現(xiàn)存活率不佳,原因比較復雜,常見原因可歸納為:培養(yǎng)基使用錯誤或培養(yǎng)基品質不佳;血清使用錯誤或血清的品質不佳;解凍過程錯誤;冷凍細胞解凍后,加以洗滌細胞和離心;懸浮細胞誤認為死細胞;培養(yǎng)溫度使用錯誤;細胞置于–80 ℃太久等。建議嚴格參照ATCC或ECACC的標準操作規(guī)程進行細胞復蘇、凍存等工作。
6.支原體污染會對細胞培養(yǎng)有何影響?
答:支原體污染幾乎可影響所有細胞之生長參數(shù)、代謝及研究之任一數(shù)據(jù)。故進行實驗前,必須確認細胞為mycoplasma-free,實驗結果之數(shù)據(jù)方有意義。
7.冷凍保存細胞之方法?
答:冷凍保存方法一: 冷凍管置于4℃(30-60 分鐘)→-20℃( 30 分鐘) → -80℃(16-18 小時或隔夜)→ 液氮罐長期儲存。
冷凍保存方法二: 冷凍管置于已設定程序之可程序降溫機中每分鐘降1-3℃至–80 ℃以下, 再放入液氮中長期儲存。注意:-20℃不可超過1 小時,以防止冰晶過大,造成細胞大量死亡,亦可跳過此步驟直接放入-80℃冰箱中,惟存活率稍微降低一些。
8.懸浮細胞應如何繼代處理?
答:一般僅需持續(xù)加入新鮮培養(yǎng)基于原培養(yǎng)瓶中,稀釋細胞濃度即可。若培養(yǎng)液太多時可分瓶取出一部份含細胞之培養(yǎng)液至另一新的培養(yǎng)瓶中,加入新鮮培養(yǎng)基稀釋至適當濃度,重復前述步驟即可。
9.欲將一般動物細胞離心下來,其離心速率應為多少轉速?
答:欲回收動物細胞,其離心速率一般為300×g (約1,000rpm),5 - 10 分鐘,過高之轉速過長時間都將造成細胞死亡。合適的離心轉速是根據(jù)相對離心決定。 RCF=1.119×105×r×(rpm)2,其中 r為離心機轉軸中心與離心套管底部內(nèi)壁的距離;rpm為離心機每分鐘的轉數(shù);RCF(relative eentrifugal force)為相對離心力,以重力加速度g(980.66cm/s2)的倍數(shù)來表示表示單位。
10.培養(yǎng)細胞時應使用5%還是10%CO2,或者根本沒有影響?
答:一般培養(yǎng)基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作為pH 的緩沖系統(tǒng), 而培養(yǎng)基中NaHCO3的含量將決定細胞培養(yǎng)時應使用的CO2濃度。當培養(yǎng)基中NaHCO3 含量為每公升3.7g時,細胞培養(yǎng)時應使用10% CO2;當培養(yǎng)基中NaHCO3為每公升1.5g時,則應使用5%CO2培養(yǎng)細胞。
11.細胞冷凍管解凍培養(yǎng)時,是否應馬上去除DMSO?
答:除少數(shù)特別注明對DMSO敏感之細胞外,絕大部分細胞株(包括懸浮性細胞),在解凍之后,應直接放入含有10-15ml新鮮培養(yǎng)基之培養(yǎng)方瓶中,待隔天再置換新鮮培養(yǎng)基以去除DMSO即可,如此可避免大部分解凍后細胞無法生長或貼附之問題。
12.冷凍管應如何解凍?
答:取出冷凍管后,須立即放入37℃水槽中快速解凍,輕搖冷凍管使其在1-2 分鐘內(nèi)大部分融化,特別注意,需殘留一小塊冰塊,就可拿到超凈工作臺操作細胞,用75%消毒凍存管,用新鮮培養(yǎng)基將細胞轉移至培養(yǎng)瓶。另外冷凍管由液氮桶中取出解凍時,必須注意安全,預防冷凍管之爆裂
13.如何用臺盼蘭計數(shù)活細胞?
答:將樣品適當稀釋后,用稀釋后的樣品和0.4%的臺盼蘭溶液按1:1混合后,用移液槍點樣到血球計數(shù)板,置于倒置顯微鏡下觀察、計數(shù),其中藍色細胞是死細胞,因活細胞排斥臺盼蘭,不被染色。
14.細胞欲冷凍保存時,細胞冷凍管內(nèi)應有多少細胞濃度?
答:冷凍管內(nèi)細胞數(shù)目一般為1-8×106 cells/ml vial。
15.細胞冷凍培養(yǎng)基之成份為何?
答:動物細胞冷凍保存時zui常使用的冷凍培養(yǎng)基是含9 - 10 %DMSO (dimethyl sulfoxide) 和90 - 95 % 原來細胞生長用之新鮮培養(yǎng)基均勻混合之。注意:由于DMSO 稀釋時會放出大量熱能,故不可將DMSO 直接加入細胞液中,必須使用前先行配制完成。
16.如何消除組織培養(yǎng)的污染?
答:當重要的培養(yǎng)細胞污染時,研究者可能試圖消除或控制污染。首先,確定污染物是細菌、真菌、支原體或酵母,把污染細胞與其它細胞系隔離開,用實驗室消毒劑消毒培養(yǎng)器皿和超凈臺,檢查HEPA過濾器。
高濃度的抗生素和抗霉菌素可能對一些細胞系有毒性,因而,做劑量反應實驗確定抗生素和抗霉菌素產(chǎn)生毒性的劑量水平。這點在使用抗生素如兩性霉素B和抗霉菌素如泰樂菌素時尤其重要。下面是推薦的確定毒性水平和消除培養(yǎng)污染的實驗步驟。
1)在無抗生素的培養(yǎng)基中消化、計數(shù)和稀釋細胞,稀釋到常規(guī)細胞傳代的濃度。
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