人原代腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞的分離實(shí)驗(yàn)材料與操作方法!
一、實(shí)驗(yàn)材料
1、樣本來源:人腦組織(通常來源于手術(shù)切除的皮質(zhì)灰質(zhì)區(qū)域,需符合倫理規(guī)范)。
2、試劑
PBS(含青霉素100 U/ml和鏈霉素100 μg/ml)
膠原酶(1 mg/ml)和DNaseⅠ(10 μg/ml)混合消化液
250 g/L牛血清白蛋白(BSA)
基礎(chǔ)培養(yǎng)基(如DMEM或特制培養(yǎng)基)
3、耗材
眼科剪、鑷子
不同孔徑尼龍篩(60 μm、150 μm、230 μm)
離心管(15 ml、50 ml)
二、實(shí)驗(yàn)步驟
1、組織處理
將人腦組織置于預(yù)冷的PBS中,去除腦膜及表面大血管,保留皮質(zhì)灰質(zhì)。
使用勻漿機(jī)將灰質(zhì)組織制成勻漿,以釋放微血管片段。
2、酶消化
加入含膠原酶和DNaseⅠ的消化液,37℃消化1小時(shí),隨后離心去除上清中的脂肪碎片和髓磷脂。
將沉淀重新懸浮于消化液中,繼續(xù)消化1-3小時(shí)以充分解離微血管。
3、分級(jí)過濾
消化產(chǎn)物依次通過230 μm和150 μm尼龍篩,去除大血管和碎片。
濾液通過60 μm尼龍篩,收集截留的微血管內(nèi)皮細(xì)胞,并用培養(yǎng)基沖洗至培養(yǎng)皿中。
4、純化與培養(yǎng)
使用250 g/L BSA梯度離心(4000 rpm,10分鐘)進(jìn)一步純化微血管內(nèi)皮細(xì)胞。
將細(xì)胞重懸于含特制添加劑的培養(yǎng)基(如原代內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)基),接種至多聚賴氨酸包被的培養(yǎng)板中,置于37℃、5% CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
三、關(guān)鍵注意事項(xiàng)
樣本新鮮度:人腦組織需盡快處理(建議在2小時(shí)內(nèi)),避免細(xì)胞活性下降。
污染控制:嚴(yán)格無菌操作,并在PBS中添加抗生素防止微生物污染。
酶消化優(yōu)化:膠原酶濃度和消化時(shí)間需根據(jù)組織特性調(diào)整,過長可能導(dǎo)致細(xì)胞損傷。
純度驗(yàn)證:可通過免疫熒光染色鑒定內(nèi)皮細(xì)胞純度。
四、與動(dòng)物模型方法的差異
組織處理:人腦組織通常更致密,需更長時(shí)間消化(動(dòng)物模型多采用30-45分鐘)。
篩網(wǎng)選擇:動(dòng)物模型多用離心法分層,而人源細(xì)胞依賴分級(jí)過濾。
培養(yǎng)基:人源細(xì)胞常需添加特制生長因子,而大鼠BMEC可用DMEM基礎(chǔ)培養(yǎng)基。
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